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理化實驗室常見注意事項!

   日期:2024-10-31 20:32:11     來源:檢驗     作者:中企檢測認證網     瀏覽:37    評論:0
核心提示:上班前①開門注意通風,檢查門窗、空調設備、其它電器設備等是否正常。②用水注意先把水龍頭的水擰開一段時

上班前

①開門注意通風,檢查門窗、空調設備、其它電器設備等是否正常。

②用水注意先把水龍頭的水擰開一段時間。

③看看今天是否要用烘箱,確定即打開,注意升溫情況。

上班過程

①烘箱、電爐、馬弗爐、高壓鍋等不用即時關掉,無人看守時也必須關掉;

②經常收拾化桌面,清理用過的用具、玻璃儀器等;

③經常檢查試劑配制使用情況,是否有過期試劑、標準液等;

④對于架上試劑瓶經常拭擦以保持干凈無灰塵;

⑤原始記錄必須是實驗過程中的實際數據,不能隨意涂改,如果對結果有懷疑,也不能劃去或撕毀,而在備注注明情況,重新做試驗并記錄,直到結果滿意;

⑥原始記錄是應統一表格,歸檔保存,按每月整理收藏,(不常有的原始記錄酌情處理);

⑦儀器用具分類擺放,用過的儀器用具即時清洗干凈,自然晾干(或烘干),置于指定位置存放,以備后用;(注意盡量不要用前匆匆忙忙清洗儀器用具。)

下班

①確認未完成試驗樣品及儀器的安全性;

②關閉所有電源,培養箱、冰箱除外;

③確認關好水龍頭;

④確認關好所有門窗;

標準液標定注意事項

普通注意事項:

1.各種基準物質烘干的溫度要求并不一樣;

2.烘干過程,稱量瓶的蓋子應置于稱量瓶上,傾斜一定角度使半蓋狀態,不要把蓋另置于烘箱板上,這是為了防止有異物從烘箱頂部跌落到樣品中,也防止把烘箱板上的異物帶入樣品中;

3.樣品應置于溫度計探頭附近;

4.烘好后,把干燥器移到烘箱邊,用夾子等圈住稱量瓶,以最短的時間把稱量瓶移入干燥器中,蓋好干燥器,半個小時內,小心移開干燥器蓋少許,以放出部分熱空氣;

5.樣品冷卻后則要稱量,不能待太長時間;

6.稱量時始終一個原則,不要讓稱量瓶吸附到水氣、污跡或其它異物,所以直接用手接觸稱量瓶、用藥匙取樣品、開著天平門稱量甚至呼吸氣吹到稱量瓶都是不正確的操作;

7.正確的稱量操作應是減量法稱量,為什么呢,因為減量法稱量,稱的是烘好的樣品,確保樣品大部分時間在天平的干燥環境中;

8.如果增量法稱量,則要確保器皿干燥且外表也須干凈,由于是在天平中操作,所以不能碰到器皿以引起天平讀數異常,所以操作起來會麻煩很多;

9.稱量過程中,只能用稱量瓶蓋輕輕敲打稱量瓶邊緣,使藥品均勻落到待測器皿中,敲藥時間盡量的短,這要求較熟練的操作;

10.盡可能的多稱幾個樣品,結果取最可能的數值,舍棄較大和較小的數值。

關鍵:

烘干

冷卻

稱量

還原糖測定注意事項

普通注意事項:

1.堿性酒石酸甲、乙液與還原糖反應是定量關系,它們的多少直接影響測定結果的多少,從而影響檢測數據,所以堿性酒石酸甲、乙液必須精確吸取,保證每次取樣量一致。

影響堿性酒石酸甲、乙液吸取誤差的因素:

(1)堿性酒石酸甲、乙液在吸管中刻度液面的位置要保持一致。

(2)吸管外壁殘留的液體多少會造成堿性酒石酸甲、乙液取樣量的誤差,所以要習慣性的對吸管外壁的堿性酒石酸甲、乙液進行相同處理,保證每次外壁殘留液相對一致,從而減少液體取樣量的誤差。

(3)堿性酒石酸甲、乙液放入三角瓶的速度保持一致(不可吹),放完后要觀察其殘留在吸管中有多少,要保證每次殘留一致。

(4)堿性酒石酸甲、乙液的不是很明顯的沉淀(或濃度變化)也會對測定造成波動,取堿性酒石酸甲液的器具切記不要與堿性物質接觸(同時也要注意防止帶入堿性物質于甲液中),以避免甲液產生沉淀,盛甲液的容器時間長了,內壁上也會殘留固體(硫酸銅),這些固體顆粒也會造成檢測誤差。

2.滴定速度要保持均衡一致,趁熱以每2秒一滴的速度滴定為好(速度不要受滴定時間的長短而改變);

3.試樣溶液滴定時要進行預測,正式測定時從滴定管滴加比預測體積少1ml的試樣溶液至錐形瓶中,控制在2min中內加熱至沸,保持沸騰以1滴/2s的速度滴定至終點;

4.電爐的溫度對檢測結果也有影響,所以要保證電爐充分預熱,同時三角瓶在電爐上的放置位置要保持一致;

5.測定時液體沸騰后的開始滴定的時間也要保持一致2min內,一般等液體充分沸騰后開始滴定;

6.滴定終點的判斷也要保持一致。等液體藍色剛好褪去為為滴定終點;

7.糖液稀釋及取樣也要注意精確,注意吸管正確使用方法;

8.折光糖度精心檢測,依此數據輔導還原糖的檢測。

9.注意輸液膠管漏液、變形,滴定管尖端氣泡等對檢測數值的影響。

10.三角瓶使用后清洗干凈。

有時無法準確找到滴定終點就是由于三角瓶未清洗干凈引起的。

關鍵:

吸取堿性酒石酸甲、乙液

沸騰并維持沸騰2 mins

整個滴定過程須控制在2 mins內完成

凱氏定氮蛋白質測定注意事項

普通注意事項:

1.原則上樣品越少,越容易消化,但樣品越少,計量的誤差可能性也越大,

所以控制到蛋白質含量為0.10g左右,加入0.4g硫酸銅、6g硫酸鉀及20ml濃硫酸應是比較合理的消化方法;

2. 變色時因為是緩慢變色,所以可以兩種方法計時,一是完全變色后半小時即停止消化,二是剛變色后一個小時停止消化;

3.消化液完全冷卻后才能加水、轉移、定容,這三個步驟都會導致發熱,所以必須確保水溶液最后在定容到刻度時冷卻到室溫,當然要多次洗滌凱氏燒瓶(即凱氏定氮瓶)以確何轉移完全;

4. 消化液最好不要放置過液,需要過夜測定時,請先轉移定容好消化液。定容好的消化夜也不能放置時間太久(如幾天)才進行蒸餾滴定;

5.蒸餾時,加樣液過程可以從容操作,但是加堿后,必須緊密有序,堿的流入過程應是充滿整個漏斗口的,在堿還沒有放完時就應準備好加水以封住漏斗口,確保蒸發器中已有氨從漏斗口泄漏,而導致結果偏低。

6.加入的氫氧化鈉溶液除與硫酸銨作用外,還與消化液中的硫酸和硫酸銅作用,若加入的氫氧化鈉不夠,則溶液呈藍色,不生成褐色的氫氧化銅沉淀。所以,加入的氫氧化鈉必須過量,并且動作還要迅速,以防止氨的流失;

7. 停止蒸餾時,由于反應室外層的壓力突然降低,可使液體倒吸入反應室外層,所以,操作時,應先將冷凝管下端提高液面并清洗管口,再蒸一分鐘后關掉熱源。蒸餾是否完全,可用精密pH試紙測冷凝管口的冷凝液來測定,中性則說明已蒸餾完全;

關鍵:

樣品稱量入凱氏燒瓶

加堿

附:做蛋白質試驗化驗室的常見問題有,你犯了幾個:

1 沒有用長條紙稱量;

2 不知道樣品精確度是多少,用何種天平稱量;

3 直接從原試劑瓶中取藥稱量;

4 凱氏燒瓶角度不對(應45-60度之間);

5 不固定凱氏燒瓶就進行消化,就是隨便掛上去,太危險;

6 消化溫度不知如何控制,什么時候該小火,小到多少,什么時候該大火擔心不加石棉網會使凱氏燒瓶破裂;

7 不知如何把握凱氏燒瓶以振搖消化液,也沒有準備厚手套;

8 不知道過夜保存的應是消化液而不是定容液(消化液定容后應及時蒸餾);

9 第二天發現定容液液面低于刻度時又加水到刻度;

10 標定基準物沒有烘到要求溫度;

11 以為蒸餾要在通風櫥中進行;

12 不知道定氮儀如何裝,如何清洗,總是拆下來人工清洗,結果洗不干凈又打破了不少零件;

13 不知如何正常使用定氮儀,對后面的操作如清洗、加堿注意事項、蒸餾火力控制等無所適從;

13 對結果沒有考慮到要計算干基還是濕基;

14 吸管吸樣品液后沒有用濾紙把沾在吸管外壁的樣液吸干;

15 用吸管去吸標準液加到滴定管中去;

16 沒有取下滴定管自然垂直查看刻度;

17 用2000ml的大燒瓶作蒸發器而不作任何固定,危險重重,對用大三角瓶作為蒸發器覺得不可理議;

18 對原始記錄管理不到位。

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